Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołłątaja w Krakowie - Centralny System Uwierzytelniania
Strona główna

Techniki mikroskopowe

Informacje ogólne

Kod przedmiotu: H.1s.TEC.SM.HBIOZ
Kod Erasmus / ISCED: (brak danych) / (brak danych)
Nazwa przedmiotu: Techniki mikroskopowe
Jednostka: Katedra Genetyki, Hodowli i Etologii Zwierząt
Grupy: Biologia stosowana II stopnia I sem. obowiązkowe
Punkty ECTS i inne: 4.00 LUB 3.00 (zmienne w czasie) Podstawowe informacje o zasadach przyporządkowania punktów ECTS:
  • roczny wymiar godzinowy nakładu pracy studenta konieczny do osiągnięcia zakładanych efektów uczenia się dla danego etapu studiów wynosi 1500-1800 h, co odpowiada 60 ECTS;
  • tygodniowy wymiar godzinowy nakładu pracy studenta wynosi 45 h;
  • 1 punkt ECTS odpowiada 25-30 godzinom pracy studenta potrzebnej do osiągnięcia zakładanych efektów uczenia się;
  • tygodniowy nakład pracy studenta konieczny do osiągnięcia zakładanych efektów uczenia się pozwala uzyskać 1,5 ECTS;
  • nakład pracy potrzebny do zaliczenia przedmiotu, któremu przypisano 3 ECTS, stanowi 10% semestralnego obciążenia studenta.

zobacz reguły punktacji
Język prowadzenia: polski
Skrócony opis:

Celem przedmiotu jest zapoznanie studentów z technikami przygotowania i obrazowania materiału biologicznego stosowanymi w biologii komórki i histologii, a także nauka przeprowadzania eksperymentów z użyciem różnego typu mikroskopów. W ramach ćwiczeń wykonywane są preparaty mikroskopowe (parafinowe, mrożeniowe, wymazy i rozmazy) oraz ich dokumentacja fotograficzna i komputerowa analiza obrazu. Studenci zapoznają się ze sposobem pobierania, utrwalania oraz zatapiania materiału biologicznego. Wykonywane są barwienia różnych struktur komórkowych i tkankowych, określanie aktywność wybranych enzymów, wykrywanie substancji o charakterze antygenowym za pomocą znakowanych przeciwciał, a także lokalizacja sekwencji powtarzalnych w genomie zwierząt z wykorzystaniem Fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ.

Pełny opis:

Wykłady

- Optyka: fala świetlna i elektromagnetyczna, zjawisko interferencji, dyfrakcji, załamania i odbicia światła, zwierciadła i soczewki, etc. - 2 godz.

- Mikroskopia optyczna: typy mikroskopów optycznych, układów optycznych, mikroskopia konfokalna; Mikroskopia elektronowa transmisyjna i skaningowa, analiza elektronogramów - 2 godz.

- Metody badawcze w biologii komórki i histologii: metody przygotowania i obrazowania materiałów biologicznych w mikroskopie świetlnym i elektronowym, rodzaje preparatów mikroskopowych - 2 godz.

- Technika mrożeniowa i parafinowa - 2 godz.

- Podstawy histochemii i cytochemii - 2 godz.

- Podstawy immunocytochemii i immunohistochemii - 2 godz.

- Hybrydocytochemia (hybrydyzacja in situ). Hodowle komórkowe i tkankowe - 1 godz.

- Cytometria przepływowa i autoradiografia - 1 godz.

- Analiza ilościowa preparatów mikroskopowych. Densytometria, morfometria, komputerowa analiza obrazu

Ćwiczenia

- Techniki oświetlenia obiektu w różnych typach mikroskopów.

Technika mrożeniowa (pobieranie, zamrażanie i przechowywanie materiału biologicznego; krojenie skrawków z zamrożonego materiału przy użyciu kriostatu; barwienie przyżyciowe; barwienie topograficzne

5 godz.

- Reakcje histochemiczne i cytochemiczne (wykrywanie składników komórkowych – tłuszczów, lipidów, glikogenu; określanie lokalizacji i aktywności wybranych enzymów; reakcje kontrolne)

Reakcje immunohistochemiczne i immunocytochemiczne z wybranymi przeciwciałami mono- lub poliklonalnymi, reakcje kontrolne

5 godz.

- Technika parafinowa (pobieranie, utrwalanie, odwadnianie, przeprowadzanie przez płyny pośrednie oraz zatapianie w parafinie materiału biologicznego, krojenie skrawków parafinowych przy użyciu mikrotomu rotacyjnego - 4 godz.

- Metody barwień preparatów parafinowych (barwienie jąder komórkowych, barwienie topograficzne H/E, barwienie zrębu łącznotkankowego, etc.) - 4 godz.

- Barwienie rozmazów i wymazów; wykrywanie struktur komórkowych i tkankowych z zastosowaniem różnych znaczników fluorescencyjnych - 4 godz.

- Lokalizacja sekwencji powtarzalnych w genomie zwierząt z wykorzystaniem Fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ - 4 godz.

- Dokumentacja fotograficzna i analiza komputerowa wykonanych preparatów - 4 godz.

Literatura:

1. Bagiński S. 1969. Technika mikroskopowa. PWN, Warszawa.

2. Zawistowski S. 1970 Technika histologiczna oraz podstawy histopatologii. PZWL, Warszawa.

3. Lityńska A., Lewandowski M. 1998. Techniki badań fizjologicznych. Wydawnictwo Uniwersytetu Jagiellońskiego, Kraków.

4. Stevens A., Lowe J. 2000. Histologia człowieka. Wydawnictwo Lekarskie PZWL.

5. Atlas Histologii. 2002. Red. U. Welsch. Wydawnictwo Medyczne Urban & Partner, Wrocław.

6. Litwin J.A. Podstawy technik mikroskopowych. Collegium Medicum UJ, Kraków 1995.

7. Mercer E.H., Birbeck M.S.C. Mikroskopie elektronowa. PWN Warszawa 1970.

8. Lisiecka U., Kostro K., Jarosz Ł. Cytometria przepływowa jako nowoczesna metoda w diagnostyce i prognozowaniu chorób. Medycyna Weterynaryjna 2006, 62 (9) 998-1001.

Efekty uczenia się:

Wiedza

- Opisuje i definiuje pojęcia i zagadnienia z optyki (fala świetlna i elektromagnetyczna, zjawisko interferencji, dyfrakcji, załamania i odbicia światła, zwierciadła i soczewki, teoria mikroskopu, powstawanie obrazu w mikroskopie, lupa, mikroskopia elektronowa transmisyjna i skaningowa, typy mikroskopów optycznych, układów optycznych i technik oświetlenia obiektu, mikroskopia konfokalna, etc.)

- Opisuje rodzaje i sposoby analizy preparatów mikroskopowych w mikroskopii świetlnej i elektronowej oraz charakteryzuje techniki i sposoby ich wykonywania

- Charakteryzuje i objaśnia rodzaje barwień i reakcji histologicznych, cytochemicznych, histochemicznych, immunocytochemicznych, immunohistochemicznych, reakcji kontrolnych, a także objaśnia i opisuje wady i zalety wykorzystania przeciwciał monoklinalnych i poliklonalnych w metodach immunocytochemicznych i immunohistochemicznych

- Opisuje elektronogramy; objaśnia techniki stosowane w cytometrii przepływowej i autoradiografii, a także charakteryzuje rodzaje sond i sposoby ich wykorzystania do lokalizacji określonych sekwencji nukleotydów (hybrydyzacja in situ)

Umiejętności

- Potrafi prawidłowo pobierać, utrwalać, prześwietlać, zatapiać i kroić materiał biologiczny do analizy mikroskopowej, a także przeprowadzać eksperymenty z użyciem mikroskopów (światła przechodzącego, ciemnego pola, kontrastowo-fazowy, optyka nomarskiego, fluorescencyjny)

- Wybiera i stosuje odpowiednie barwienia oraz znaczniki fluorescencyjne w celu obrazowania poszczególnych struktur komórkowych i tkankowych

- Lokalizuje i określa aktywność enzymatyczną na skrawkach mrożeniowych tkanek oraz wykrywa substancje o charakterze antygenowym za pomocą znakowanych przeciwciał

- Potrafi stosować sondy w celu lokalizacji określonych sekwencji nukleotydów (hybrydyzacja in situ) w genomie zwierząt

- Wykonuje dokumentację fotograficzną, przeprowadza analizę morfometryczną preparatów mikroskopowych z wykorzystaniem komputerowej analizy obrazu, a także interpretuje i opracowuje statystycznie wyniki przeprowadzonej analizy mikroskopowej

Kompetencje społeczne

- Potrafi współpracować w ramach małego zespołu przyjmując różne role, a także odpowiedzialność za efekty pracy zespołu oraz bezpieczeństwo pracy własnej i innych

- Posiada świadomość swojej wiedzy i umiejętności oraz ryzyka i skutków stosowania technik badawczych i odczynników chemicznych w analityce laboratoryjnej.

Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2020/2021" (zakończony)

Okres: 2020-10-01 - 2021-02-24
Wybrany podział planu:
Przejdź do planu
Typ zajęć:
Ćwiczenia laboratoryjne, 30 godzin więcej informacji
Wykład, 15 godzin więcej informacji
Koordynatorzy: Dorota Wojtysiak
Prowadzący grup: (brak danych)
Lista studentów: (nie masz dostępu)
Zaliczenie: Zaliczenie na ocenę

Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2021/2022" (zakończony)

Okres: 2021-10-01 - 2022-02-27
Wybrany podział planu:
Przejdź do planu
Typ zajęć:
Ćwiczenia laboratoryjne, 30 godzin więcej informacji
Wykład, 15 godzin więcej informacji
Koordynatorzy: Dorota Wojtysiak
Prowadzący grup: Dorota Wojtysiak
Lista studentów: (nie masz dostępu)
Zaliczenie: Zaliczenie na ocenę

Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2022/2023" (zakończony)

Okres: 2022-10-01 - 2023-02-26
Wybrany podział planu:
Przejdź do planu
Typ zajęć:
Ćwiczenia laboratoryjne, 30 godzin więcej informacji
Wykład, 15 godzin więcej informacji
Koordynatorzy: Dorota Wojtysiak
Prowadzący grup: Dorota Wojtysiak
Lista studentów: (nie masz dostępu)
Zaliczenie: Zaliczenie na ocenę

Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2023/2024" (zakończony)

Okres: 2023-10-01 - 2024-02-25
Wybrany podział planu:
Przejdź do planu
Typ zajęć:
Ćwiczenia laboratoryjne, 30 godzin więcej informacji
Wykład, 15 godzin więcej informacji
Koordynatorzy: Dorota Wojtysiak
Prowadzący grup: Dorota Wojtysiak
Lista studentów: (nie masz dostępu)
Zaliczenie: Zaliczenie na ocenę
Opisy przedmiotów w USOS i USOSweb są chronione prawem autorskim.
Właścicielem praw autorskich jest Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołłątaja w Krakowie.
kontakt deklaracja dostępności USOSweb 7.0.3.0 (2024-03-22)