Analiza instrumentalna
Informacje ogólne
Kod przedmiotu: | H.1s.ANA.SM.HBIOZ |
Kod Erasmus / ISCED: | (brak danych) / (brak danych) |
Nazwa przedmiotu: | Analiza instrumentalna |
Jednostka: | Katedra Fizjologii i Endokrynologii Zwierząt |
Grupy: |
Biologia stosowana II stopnia I sem. obowiązkowe |
Punkty ECTS i inne: |
5.00
|
Język prowadzenia: | (brak danych) |
Skrócony opis: |
Celem nauczania jest zapoznanie studentów kierunku Bioinżynieria zwierząt z podstawowymi pojęciami oraz nowoczesnymi metodami i technikami analitycznymi stosowanymi w badaniach naukowych: technikami chromatograficznymi, spektrofotometrycznymi, metodami stosowanymi w proteomice, analizie kwasów nukleinowych, metodami służącymi do oznaczania hormonów i białek oraz mikroskopią fluorescencyjną. |
Pełny opis: |
Wykłady: Analiza instrumentalna – definicja, metody instrumentalne, zasady pobierania, przygotowywania i przechowywania próbek biologicznych do badań laboratoryjnych. Metody ekstrakcji substancji biologicznych z tkanek zwierzęcych. Etapy procesu analitycznego. Podział technik analitycznych. Metody optyczne i ich zastosowanie w badaniach laboratoryjnych (absorpcjometria, spektrofotometria UV/VIS, spektrofotometria w podczerwieni (IR). Metody chromatograficzne – typy chromatografii, chromatografia HPCL i jej zastosowanie w analizach biologicznych. Metody analityczne i urządzenia wykorzystywane w proteomice (strategie proteomiczne, przygotowanie próbek analitycznych, elektroforeza białek, analiza żeli, spektrometria masowa, zintegrowane systemy analityczne). Metoda Wsstern blot - opis metody i jej wykorzystanie w badaniu ekspresji genów na poziomie translacji. Technika immunoenzymatyczna i jej zastosowanie w diagnostyce laboratoryjnej i badaniach naukowych. Mikroskopia fluorescencyjna i jej wykorzystanie w badaniach naukowych. Ćwiczenia: Wprowadzenie do ćwiczeń - zasady BHP, podstawowe techniki i urządzenia laboratoryjne, zasady prawidłowego pipetowania. Pobieranie i przygotowanie tkanek zwierzęcych do analiz laboratoryjnych. Izolacja białka z tkanek zwierzęcych oraz ilościowa analiza jego stężenia metodą Bradford - opracowanie wyników. Oczyszczanie białek metodą dializy. Zastosowanie chromatografii bibułowej i kolumnowej do analizy białek. Rozdział elektroforetyczny białek (SDS-PAGE). Technika Western blot. Zastosowanie techniki immunoenzymatycznej w oznaczaniu stężenia białek i/lub hormonów steroidowych. Wykorzystanie mikroskopii fluorescencyjnej do badania procesu apoptozy. |
Literatura: |
Podstawowa: 1. Andrzej Kozik, Maria Rąpała-Kozik, Ibeth Guevara-Lora, „Analiza instrumentalna w biochemii. Wybrane problemy i metody instrumentalnej biochemii analitycznej”, Instytut Biol. Mol., UJ, Kraków 2001. 2. Agnieszka Kraj i Jerzy Silberring, „Proteomika”, Wydział Chemii UJ, 2004. 3. Agnieszka Kraj, Anna Drabik, Jerzy Silberring, „Proteomika i metabolomika” Wyd, Uniwersytetu Warszawskiego, 2010." Uzupełniająca: "1. Zygfryd Witkiewicz, „Podstawy chromatografii”, Wyd. Naukowo-Techniczne, Warszawa, 1992. 2. Genowefa Ślósarek, „Biofizyka molekularna”, Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2011. 3. Grzesiak Małgorzata, Knapczyk-Stwora Katarzyna, Ciereszko Renata, Wieciech Iwona, Slomczynska Maria. Alterations in luteal production of androstenedione, testosterone, and estrone, but not estradiol, during mid- and late pregnancy in pigs: Effects of androgen deficiency. Theriogenology 2014; 82(5): 720-733." |
Efekty uczenia się: |
Wiedza: - zna i rozumie - podstawowe metody analityczne i instrumentalne wykorzystywane w badaniach naukowych - zasady pobierania, przygotowywania i przechowywania próbek biologicznych do badań laboratoryjnych, umie opisać metody ekstrakcji substancji biologicznych z tkanek zwierzęcych - podstawowe metody optyczne, chromatograficzne wykorzystywane w analityce laboratoryjnej oraz metody wykorzystywane w genomice i proteomice - zasadę oraz zastosowanie metody immunoenzymatycznej w badaniach naukowych Umiejętności - student potrafi: - posługiwać się podstawowymi urządzeniami laboratoryjnymi, pobierać i przygotowywać tkanki zwierzęce do dalszych analiz laboratoryjnych - wyizolować białko z tkanki zwierzęcej, oznaczyć jego stężenie metodą Bradford, przygotować próbki do rozdziału elektroforetycznego, wykonać analizę Western blot - wykonać oczyszczanie mieszaniny białek metodą dializy oraz prosty rozdział chromatograficzny mieszaniny związków chemicznych i/lub białek przy zastosowaniu chromatografii bibułowej lub kolumnowej - zaprojektować i przeprowadzić analizę immunoenzymatyczną w celu oznaczenia stężenia białka lub hormonu we krwi lub tkance - posługiwać się mikroskopem fluorescencyjnym i zastosować go w badaniach naukowych - technikę mikroskopii fluorescencyjnej oraz podaje jej zastosowanie w badaniach naukowych Kompetencje społeczne - jest gotów do: - pracy w grupie i potrafi kierować małym zespołem wykonującym analizy laboratoryjne - posiada świadomość odpowiedzialności, oraz ryzyka stosowanych metod analitycznych - ma świadomość znaczenia zasad etycznych w przeprowadzaniu doświadczeń na zwierzętach, wykonywania analiz laboratoryjnych oraz właściwej interpretacji wyników badań |
Metody i kryteria oceniania: |
Ćwiczenia: Na ocenę pozytywną należy zaliczyć wszystkie ćwiczenia oraz kolokwium zaliczeniowe w formie testu obejmującego zagadnienia omawiane na ćwiczeniach; na ocenę pozytywną należy udzielić co najmniej 55% prawidłowych odpowiedzi na zadane pytania; udział oceny z zaliczenia ćwiczeń w ocenie końcowej wynosi 40%. Wykłady: Egzamin w formie testu obejmującego zagadnienia omawiane na wykładach; na ocenę pozytywną należy udzielić co najmniej 55% prawidłowych odpowiedzi na zadane pytania; udział oceny z zaliczenia wykładów w ocenie końcowej wynosi 60%. |
Praktyki zawodowe: |
nie dotyczy |
Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2020/2021" (zakończony)
Okres: | 2020-10-01 - 2021-02-24 |
Przejdź do planu
PN WT ŚR CZ PT |
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 35 godzin
Wykład, 20 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Andrzej Sechman, Dorota Zięba-Przybylska | |
Prowadzący grup: | (brak danych) | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: | Egzamin |
Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2021/2022" (zakończony)
Okres: | 2021-10-01 - 2022-02-27 |
Przejdź do planu
PN WT ŚR CZ PT |
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 35 godzin
Wykład, 20 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Maria Mika, Dorota Zięba-Przybylska | |
Prowadzący grup: | Agnieszka Grzegorzewska, Jarosław Kański, Katarzyna Kirsz, Kinga Kowalik, Maria Mika, Izabela Szpręgiel, Dorota Zięba-Przybylska | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: | Egzamin |
Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2022/2023" (zakończony)
Okres: | 2022-10-01 - 2023-02-26 |
Przejdź do planu
PN WT ŚR CWL
CZ PT WYK
|
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 35 godzin
Wykład, 20 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Dorota Katarzyńska-Banasik, Andrzej Sechman | |
Prowadzący grup: | Agnieszka Grzegorzewska, Jarosław Kański, Dorota Katarzyńska-Banasik, Katarzyna Kirsz, Kinga Kowalik, Dorota Zięba-Przybylska | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: | Egzamin |
Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2023/2024" (zakończony)
Okres: | 2023-10-01 - 2024-02-25 |
Przejdź do planu
PN WT CWL
ŚR WYK
CZ PT CWL
|
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 35 godzin
Wykład, 20 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Dorota Katarzyńska-Banasik | |
Prowadzący grup: | Agnieszka Grzegorzewska, Jarosław Kański, Dorota Katarzyńska-Banasik, Katarzyna Kirsz, Kinga Kowalik, Dorota Zięba-Przybylska | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: | Egzamin |
Właścicielem praw autorskich jest Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołłątaja w Krakowie.