Diagnostyka molekularna i cytogenetyczna w biotechnologii zwierząt
Informacje ogólne
Kod przedmiotu: | B.1s.DMC.SM.BBTSA | Kod Erasmus / ISCED: | (brak danych) / (brak danych) |
Nazwa przedmiotu: | Diagnostyka molekularna i cytogenetyczna w biotechnologii zwierząt | ||
Jednostka: | Katedra Biotechnologii Zwierząt | ||
Grupy: | |||
Punkty ECTS i inne: |
5.00 ![]() ![]() |
||
Język prowadzenia: | polski | ||
Skrócony opis: |
Przedmiot wykłada m. in. rolę genu i genomu jako źródła informacji dla celów diagnostycznych oraz zjawisko polimorfizmu DNA. Student ocenia jakość i ilość izolowanego z materiałów biologicznych gDNA. Zaznajamia się z metodami detekcji mutacji na poziomie DNA. Zapoznaje się z możliwościami wykorzystania metody PCR w hodowli zwierząt. Praktycznie przeprowadza amplifikację fragmentów wybranych genów i przy zastosowaniu metody RFLP rozpoznaje genotypy zwierząt i interpretuje wyniki analiz laboratoryjnych. Przeprowadza analizę polimorfizmu loci mikrosatelitarnych w kontekście ustalania pokrewieństwa i badań filogenetycznych. Poznaje metody przesiewowego badania mutacji (SNP) w populacjach zwierzęcych m.in. PCR-SSCP, TGGE, DGGE.W trakcie zajęć omawiane jest zastosowanie molekularnych metod w badaniach cytogenetycznych, fizyczne i genetyczne mapy chromosomów a także metoda hybrydyzacji „in situ”. technika primer in situ synthesis (PRINS), in situ nick translacja (ISNT). |
||
Pełny opis: |
Wykłady: - Genom źródłem informacji dla celów diagnostycznych. Przyczyny i rodzaje mutacji. Detekcja mutacji na poziomie DNA, rodzaje mutacji i skutki mutacji genowych - Markery molekularne wykorzystywane w ocenie użytkowości mięsnej, mlecznej i rozpłodowej zwierząt gospodarskich - Mutacje wywołujące choroby genetyczne u bydła, owiec, świń koni i ptaków - Zastosowanie diagnostyki molekularnej w weterynarii - Zastosowanie analizy loci mikrosatelitarnych i minisatelitarnych oraz metody RAPD w określaniu pokrewieństwa zwierząt (kontroli pochodzenia, badaniach filogenetycznych) - Zastosowanie metod molekularnych w badaniach cytogenetycznych. Fizyczne i genetyczne mapy chromosomów - Technika primer In situ synthesis (PRINS), in situ nick translacja (ISNT) - Sposoby otrzymywania sond molekularych i ich wykorzystanie w praktyce hodowlanej Ćwiczenia: - Metody pobierania, przechowywania materiału biologicznego, izolacja DNA, zasady oceny, przechowywania i przesyłania wyizolowanego DNA - Identyfikacja zmienności metodą PCR-RFLP, zastosowanie jej w identyfikacji genów o duzym efekcie. Optymalizacja reakcji PCR z wykorzystaniem gradientu temperatury anilingu, ocena specyficzności produktu, czynniki warunkujące efektywność reakcji PCR Zastosowanie metody PCR-RFLP w identyfikacji genów o dużym efekcie. - Real-time PCR, genotypowanie zwierząt metodą różnicowania alleli AD - Izolacja DNA genomowego z produktów zwierzęcych przetworzonych. Metody oczyszczania DNA, przygotowanie produktu PCR do sekwencjonowania - Polimorfizm konformacyjny ssDNA –SSCP, MSSCP – możliwości zastosowania w badaniu SNP w populacjach zwierzęcych. Optymalizacja metody, wizualizacja wyników metodą srebrzenia. - Wykonanie reakcji multipleks PCR dla loci mikrosatelitarnych. Przeprowadzenie elektroforezy produktów PCR w przygotowanym żelu poliakrylamidowym w warunkach denaturujących. Barwienie rozwiniętego żelu metodą srebrzenia. Odczyt i interpretacja wyników. - Zakładanie hodowli in vitro limfocytów krwi obwodowej. rozwiązywanie hodowli, utrwalanie chromosomów mitotycznych, sporządzanie preparatów mikroskopowych. technika prostego barwienia giemzą i analiza liczby i struktury chromosomów metafazowych - Technika primer in situ synthesis (PRINS), in situ nick translacja (ISNT) Znakowanie sond molekularnych technikami DOP PCR oraz NIK translacją. Oczyszczanie sond oraz przygotowanie do hybrydyzacji - Technika fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ – FISH, analiza preparatów w mikroskopie fluorescencyjnym |
||
Literatura: |
Podstawowa: Avise J.C. Markery molekularne, historia naturalna i ewolucja, Wydawnictwa Uniwersytetu Warszawskiego;. 2008 Biotechnologia Zwierząt pod red. Zwierzchowskiego PWN; 1997 Genetyka zwierząt. K. Charon i M. Świtoński, PWN, 2004 Uzupełniająca: Genomy. Brown, PWN, 2009 |
||
Efekty uczenia się: |
WIEDZA - absolwent zna i rozumie: - metodologię pracy doświadczalnej pozwalającą na projektowanie, prowadzenie i analizę wyników eksperymentów in vivo z zakresu biotechnologii zwierząt - zaawansowane metody, techniki, materiały oraz analizy instrumentalne wykorzystywane w biotechnologii zwierząt - w pogłębionym stopniu zagadnienia z zakresu genomiki, proteomiki i regulacji ekspresji genów, wykorzystania technik biotechnologicznych w selekcji i doskonaleniu zwierząt UMIEJĘTNOŚCI - absolwent potrafi: - samodzielnie przeprowadzać eksperymenty, interpretować ich wyniki, wyizolować kwasy nukleinowe ze zwierzęcego materiału biologicznego, ocenić jego jakość i przydatność do analiz molekularnych. - dobierać techniki diagnostyki genetycznej w poszukiwaniu zmienności u zwierząt, ustala parametry stosowanych reakcji. - stosować techniki cytogenetyczne. Zakłada hodowle in vitro limfocytów i utrwala chromosomy mitotyczne i sporządza preparaty mikroskopowe. Weryfikuje uzyskane wyniki. KOMPETENCJE SPOŁECZNE - absolwent jest gotów do: - współpracy w ramach małego zespołu |
||
Metody i kryteria oceniania: |
Wykłady - egzamin pisemny, udział oceny z wykładów w ocenie końcowej wynosi 60% Ćwiczenia - test jednokrotnego/wielokrotnego wyboru, udział oceny z zaliczenia ćwiczeń w końcowej ocenie modułu wynosi: 40% |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2017/2018" (zakończony)
Okres: | 2018-02-26 - 2018-09-30 |
![]() |
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 45 godzin ![]() Wykład, 15 godzin ![]() |
|
Koordynatorzy: | Urszula Kaczor | |
Prowadzący grup: | Krzysztof Andres, Monika Bugno-Poniewierska, Urszula Kaczor, Małgorzata Szczęsna | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Egzamin
Wykład - Egzamin |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2018/2019" (zakończony)
Okres: | 2019-02-25 - 2019-09-30 |
![]() |
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 45 godzin ![]() Wykład, 15 godzin ![]() |
|
Koordynatorzy: | Urszula Kaczor | |
Prowadzący grup: | Krzysztof Andres, Monika Bugno-Poniewierska, Urszula Kaczor, Przemysław Podstawski, Agnieszka Sutkowska, Małgorzata Szczęsna | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Egzamin
Wykład - Egzamin |
Właścicielem praw autorskich jest Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołłątaja w Krakowie.